Caja de prueba de glucosa Oxigenasa 100 tubos / 48 muestras

Pasos de determinación:

1. El medidor de estándar enzimático se precalienta durante más de 30 minutos y ajusta la longitud de onda a 450 nm.

2. dilución del reactivo 3: diluir el reactivo 3 con agua destilada 50 veces y distribuirlo tanto como sea necesario. (el reactivo 3 y el agua destilada se diluyen a 1: 49.

3. preparación de la solución de trabajo: añadir 100 μl de reactivo 2 al reactivo 1 y mezclar completamente. El reactivo preparado se puede conservar durante una semana a 4 ° C para evitar la luz. (si hay menos muestras de determinación única, el reactivo 1 y el reactivo 2 se pueden mezclar y preparar de acuerdo con la cantidad real en una proporción de 20 ml: 0,1 ml)

4. disolver una botella de reactivo cuatro con 5 ml de agua destilada (agotada dentro de una semana después de la disolución).

5. determinación de la muestra (añadir los siguientes reactivos a la placa de 96 agujeros a su vez)

Recordatorio especial: este producto es solo para investigación científica y no se puede utilizar para pruebas clínicas directas en humanos.

Introducción al producto:

Precauciones para elegir la anticoagulación:

①. la cantidad de Anticoagulantes añadidos a cada muestra debe ser la misma, y la cantidad de sangre entera tomada también debe ser la misma en la medida de lo posible;

②. después de recoger toda la sangre anticoagulante, debe invertirse suavemente, anticoagulante completamente para evitar que parte de la sangre no esté expuesta al anticoagulante y conduzca a la coagulación;

③. la sangre entera anticoagulante recoge relativamente más plasma (1 ml de sangre entera anticoagulante puede separar 0,4 a 0,5 ml de plasma);

④. después de la congelación y conservación del plasma recogido por anticoagulación, puede aparecer turbidez floculante durante el deshielo, y si es necesario, es necesario centrifugar para eliminar la turbidez para la determinación.

pasos de operación:

Antes de que comience el experimento, cada reactivo debe equilibrarse a temperatura ambiente (el reactivo no puede estar directamente enDisolución a 37 ° c); Al diluir el reactivo o la muestra, es necesario mezclar bien y tratar de evitar la ampollas al mezclar bien. Antes del experimento se debe predecir el contenido de la muestra, como cuando la concentración de la muestra es demasiado alta, la muestra debe diluirse para que la muestra diluida se ajuste al rango de detección del kit, y el cálculo se multiplica por el múltiplo de dilución correspondiente.

1. adición de muestras: se establecen agujeros en blanco, agujeros estándar y agujeros de muestra a medir, respectivamente. Añadir 100 μl de diluyente de muestra a los agujeros en blanco y 100 μl de estándar o muestra a medir a los agujeros restantes, prestar atención a no tener burbujas, añadir muestras a la parte inferior del agujero de la placa estándar de enzima, tratar de no tocar la pared del agujero, sacudir suavemente y mezclar bien, añadir tapa o película a la Placa estándar de enzima, reaccionar a 37 ° C durante 120 minutos. Para garantizar la validez de los resultados experimentales, utilice una nueva solución estándar para cada experimento.

2. desechar el líquido, secarlo y no lavarlo. Añadir 100 μl de solución de detección a por agujero (preparada dentro de la hora anterior al uso), placa estándar enzimática más película, 37 ℃ para reaccionar durante 60 minutos.

3. después de 60 minutos de calentamiento, abandone el líquido en el agujero, revuelva seco, lave la placa tres veces, remoje 1 - 2 minutos cada vez, aproximadamente 400 μl / agujero, revuelva seco (también se puede secar el líquido en el agujero con un toque).

4. añadir 100 μl de líquido de Trabajo B de solución de prueba (el mismo líquido de trabajo a de prueba) a cada agujero, y añadir 37 ℃ de película a la placa estándar enzimática para reaccionar durante 60 minutos.

5. después de 60 minutos de calentamiento, abandone el líquido en el agujero, revuelva seco, lave la placa 5 veces, remoje 1 - 2 minutos cada vez, 350 μl / agujero, revuelva seco (también se puede secar el líquido en el agujero con un toque).

6. añadir 90 μl de solución de sustrato por agujero en orden, placa estándar enzimática más película recubiertos a 37 ° C para evitar la luz y el color (dentro de los 30 minutos, en este momento, los primeros 3 - 4 agujeros del estándar se pueden ver a simple vista con un azul gradiente obvio, y el gradiente de los últimos 3 - 4 agujeros no es obvio, se puede terminar).

7. añadir 50 μl de solución final por agujero en orden para terminar la reacción, cuando el azul se vuelva amarillo. El orden de adición de la solución de terminación debe ser el mismo que el orden de adición de la solución de sustrato en la medida de lo posible. Para garantizar la precisión de los resultados experimentales, el líquido de terminación debe añadirse lo antes posible después de que llegue el tiempo de reacción del sustrato.

8. medir la densidad óptica (valor de do) de cada agujero en orden de longitud de onda de 450 nm con un analizador enzimático. La prueba se realiza inmediatamente después de agregar el líquido de terminación.

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